測定意義：

TH位于線粒體的內膜上，又稱為呼吸電子傳遞鏈復合體六，催化NADH+NADP⁺和 NAD⁺+NADPH相互轉化。催化正向反應稱為TH-1。線粒體NADH含量增加時會導致線粒體膜的H+電化學梯度升高，因而促進了電子傳遞鏈上ROS的產生。TH-1促進NADH轉換為NADPH，從而提高線粒體的抗氧化能力。

測定原理：

NADH和NADPH均在340nm有特征吸收，因此TH催化的轉氫反應不能導致340nm吸光度發(fā)生變化。用人工合成底物3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸磷酸（APADP⁺）替代NADP⁺，TH-1催化 APADP⁺還原生成的APADPH在375nm有特征光吸收，因此通過測定375nm光吸收增加速率，來計算TH-1活性。

試劑的組成和配制：

需自備的儀器和用品：

可見分光光度計/酶標儀、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研缽、冰和蒸餾水。

樣本的前處理：

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離：

1、準確稱取0.1g組織或收集500萬細胞，加入1mL試劑一，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、將勻漿600g，4℃離心5min。

3、棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11100g，4℃離心10min。

4、上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白，可用于測定從線粒體泄漏的TH-1（此步可選做）。

5、步驟4中的沉淀即為線粒體，加入500uL試劑二，超聲波破碎（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10秒，重復30次），用于TH-1活性測定。

測定步驟：

1、分光光度計或酶標儀預熱30min以上，調節(jié)波長至375nm，蒸餾水調零。

2、樣本測定

（1）工作液的配制：臨用前將試劑四、五轉移到試劑三中混合溶解，置于37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）水浴5min；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

（2）在微量石英比色皿或96孔板中加入20μL樣本和180μL工作液，混勻，立即記錄375nm處初始吸光值A1和 10min后的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。

TH-1活性計算：

a.用微量石英比色皿測定的計算公式如下

（1） 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。TH-1活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣×Cpr)÷T=149×ΔA÷Cpr

（2） 按樣本鮮重計算

單位的定義：每g組織每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。TH-1活性（nmol/min /g 鮮重）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T=74.5×ΔA÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每1萬個細菌或細胞每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。TH-1活性（nmol/min /104 cell）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T=0.149×ΔA

V反總：反應體系總體積，2×10-4 L；ε：APADPH摩爾消光系數，6.7×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.02 mL；V樣總：加入提取液體積，0.5mL；T：反應時間，10 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500萬。

b.用96孔板測定的計算公式如下

（1） 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。TH-1活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V樣×Cpr)÷T=298×ΔA÷Cpr

（2） 按樣本鮮重計算

單位的定義：每g組織每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。TH-1活性（nmol/min /g 鮮重）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T=149×ΔA÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每1萬個細菌或細胞每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。TH-1活性（nmol/min /10⁴ cell）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T=0.298×ΔA

V反總：反應體系總體積，2×10^-4 L；ε：APADPH摩爾消光系數，6.7×10³ L / mol /cm；d：96孔板光徑，0.5cm；V樣：加入樣本體積，0.02 mL；V樣總：加入提取液體積，0.5mL；T：反應時間，10 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500萬。